Application Note 穿刺核マーカーの定量化によるDNA損傷の評価

はじめに

DNAや生物製剤の損傷は、遺伝子の突然変異、癌、老化などに関与するため、生物学においてますます注目される分野となっている。DNAの損傷は自然に起こることもあれば、電離放射線、環境毒素、化学毒素への曝露の結果として起こることもある。ある化合物の遺伝毒性の作用機序を同定し、特徴づけるために使用できるin vitroアッセイがいくつかある。ヒストンH2AXのセリン139上でのリン酸化は、DNA二本鎖切断の早期かつ高感度な指標であることが示されている。また、DNA修復を調整する癌抑制タンパク質53BP1が、DNA損傷に応答してリン酸化され、核病巣を形成することも認められている1。

本研究では、リン酸化されたヒストンH2AXと53BP1の免疫蛍光検出に基づいて、化合物のDNA損傷を刺激する能力を評価するための3色自動ハイコンテントイメージャーを開発した。DNA損傷のレベルは、対照群とマイトマイシンC（MMC）、過酸化水素（H2 O2）またはエトポシドで処理した細胞との間で比較された。

利点

• 設定済みのソフトウェアモジュールを使用して、DNA損傷マーカーを簡単に定量できます。
• 共焦点イメージングを用いて個々のパンクタを正確にカウント
• 2つのマーカーの共局在を測定し、DNA損傷のメカニズムを決定する。

DNA損傷を示す核点刻を可視化

市販の試薬とImageXpress Microハイコンテントイメージングシステムを用いることで、不均一性の細胞集団においてもDNA損傷を可視化し、その特徴を明らかにすることができる。

H2AXおよび53BP1に対する一次抗体（EMD Millipore）を、蛍光標識した二次抗体（Life Technologies）で検出し、蛍光励起／発光プロファイルはそれぞれ495/519および640/680 nmとした。これらの細胞の核内の点刻を正確に検出するために、画像は通常高倍率（少なくとも40倍）で取得され、標準的なFITCおよびCy5フィルターセットを用いて検出される。

アッセイワークフロー

マルチパラメーターDNA損傷アッセイのワークフローは以下の通りである：

• 384ウェル黒壁透明薄底ポリスチレンマイクロプレートに5000～7500セル/ウェルで細胞を播種する。
• U20S細胞またはCHO細胞を37℃で一晩培養する。
• MMCまたはエトポシドの連続希釈液で細胞を24時間処理するか、過酸化水素（H 2 O 2 ）の連続希釈液で細胞を2時間処理する。
• 培地を交換し、細胞を37℃で30分間回復させた後、4％ホルムアルデヒドで室温で20分間固定する。
• PBSでセルを洗浄し、室温で1時間細胞をブロックし、透過処理する。
• 一次抗体、抗H2AX抗体と抗53BP1抗体を加え、4℃で一晩インキュベートする。
• 1x PBSで3回洗浄する
• 蛍光標識二次抗体を添加し、室温で1時間インキュベートする。
• 16 µM Hoechst 33342核染色液（最終濃度）を添加し、室温でさらに15分間インキュベートする。
• 細胞を1x PBSで3回洗浄する。
• 3つの波長で画像を取得する。
• 画像解析を行う

DNA損傷は、次のセクションで最も複雑でないものから順に説明する3つの異なる方法を用いて定量した。

損傷を受けた核の同定には、シンプルなセルスコア解析を使用します

設定済みのMetaXpress®ソフトウェア・アプリケーション・モジュールであるセル・スコアリングにより、核をDNA損傷マーカーに対して陽性または陰性に分類し、DNA損傷を示す細胞の割合を計算することができる。ワイドフィールドモードで10倍の対物レンズで1部位をイメージングすれば十分なことが多いため、画像取得と解析は迅速に行うことができる（図1）。単一の視野で、最高濃度の化合物では500個を超える細胞が得られ、マイトマイシンC（MMC）の毒性濃度以下のウェルでは2800個を超える細胞が得られた。

共焦点顕微鏡を用いた個々の核の点刻カウント精度の向上

個々のマーカーの点状染色は、細胞ごとあるいはウェルごとの数、平均強度、総面積、総強度などいくつかのパラメーターで特徴づけることができる。この実験では、ワイドフィールドモードまたは60µmピンホールコンフォーカルモードのいずれかを使用して、ImageXpress® Micro Confocalシステムで各ウェルの複数の画像を取得した。両モードともイメージングには40X Plan Apo対物レンズを用いた。画像は、核内の点刻を特異的にカウントする簡単なユーザー設定のMetaXpress®ソフトウェアモジュールで解析した。共焦点イメージャーは面外の対物レンズからの蛍光を拒絶するので、パンクタは明瞭に現れ（図2B）、より容易にセグメンテーションされる。その結果、共焦点光学系を使用して生成された画像は、個々の点刻をより正確にカウントすることができ、その結果、より大きなダイナミックレンジ（Signal/Background）と高いz'ファクターによって定義されるように、よりロバストなアッセイが可能になることが示された（図2）。

図2. A. 共焦点（赤）イメージングとワイドフィールド（緑）イメージングを用いて、エトポシド処理に対するDNA損傷応答を比較したグラフ。細胞あたりのH2AX染色点刻数をプロットした。B. 40X PA (0.95NA)対物レンズを用い、ワイドフィールドイメージング（左）と比較した共焦点モード（右）の画像は、核の点刻の視認性が向上し、バックグラウンド蛍光が減少していることを示す。C. 共焦点画像は、表に示した高いSB比と高いz'因子に反映されるように、よりロスト性の高いアッセイをもたらした。

2つのマーカーの共局在を測定

2つの異なるDNA損傷マーカーの共局在を評価することで、化合物の核毒性メカニズムに関与する生物製剤の経路について重要な洞察を得ることができる。修復タンパク質である53BP1の存在は、先に紹介した二本鎖DNA切断のマーカー（H2AXマーカー陽性細胞の割合、細胞あたりの点刻カウント／高輝度／存在面積）の測定とともに、ユーザーが設定したソフトウェア解析モジュールと高倍率共焦点画像（図3）を組み合わせて、細胞と対応するウェルの共局在化値を生成することで計算できる（図4）。

概要

ImageXpress®マイクロコンフォーカルシステムまたはワイドフィールドシステムを用いたH2AXと53BP1の高感度マルチプレックスアッセイにより、DNA損傷の定量を目的としたハイスループットなスクリーニングが可能になることを示した。従来、核マーカーの共局在を測定する必要があるアッセイでは、共焦点画像は個々の点刻をより正確に同定するために利用されてきた。これはわれわれの実験にも反映されており、ワイドフィールド画像の解析から得られたz'ファクターは0.5未満であったのに対し、共焦点モードで得られた画像は許容できるアッセイのロスト性を示した。さらに、DNA損傷の様々なメカニズムを研究するために蛍光標識マーカーをマルチプレックスする能力は、セル、試薬、時間を最も効率的に使用することを可能にする。

参考文献

1. Monika Podhorecka, Andrzej Skladanowski, and Przemyslaw Bozko, "H2AX Phosphorylation： Its Role in DNA Damage Response and Cancer Therapy," Journal of Nucleic Acids, vol. 2010, Article ID 920161, 9 pages, 2010.

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