Application Note セルにおける細胞毒性： SpectraMax Lマイクロプレートルミノメーターで
Lonza ViaLight PlusおよびToxiLightバイオアッセイを使用した簡単な測定法

はじめに

クレア・ショルフィールド博士、トレーシー・シモンズ博士、スーザン・ギル医学博士、ロンザ・ウォーカーヴィル社、キャシー・オルセン博士、モレキュラー・デバイス社。

生物発光細胞毒性アッセイは、検出限界、スピード、精度が向上し、よく知られている(Crouch et al., 1993)。健康な細胞は培養中、高いATP濃度を一定に保っている。増殖中、培養中の総ATPはセル数に応じて増加する。逆に、死にかけた細胞は、合成がうまくいかなくなるため、高いATPレベルを維持することができなくなり、レベルが低下する。培養物中に存在するATPのレベルは、存在する生存細胞数を示しており、ATPアッセイは最も予測可能な一般的細胞毒性測定法の一つであることが示されている。

細胞毒性の別の指標は、細胞膜の損傷である。これにより、薬剤がセル内に侵入し（ヨウ化プロピジウムなど）、細胞成分が周囲の培地に漏出する。細胞膜の損傷が起こると放出される酵素のひとつがアデニル酸キナーゼ（AK）であり、すべての真核細胞に存在するユビキタス・プロテインである（Squirrell and Murphy, 1997）。

Lonzaが開発したViaLight® PlusおよびToxiLight® 細胞毒性アッセイは、細胞のこのような特性を利用し、生物発光法を用いた変化の検出を可能にする。どちらのアッセイも典型的な感度は<10セル/ウェルである。ViaLight Plus アッセイは、細胞数に関係なく、直線的な減衰率で長いグローシグナルを生成するように処方されている。ToxiLightアッセイはホモジニアスで非破壊的なアッセイであり、生細胞と非生細胞の混合集団を含むウェルの直接アッセイを可能にします。このアッセイは、実験ウェルから採取した培養液のサンプルにも使用でき、必要に応じて残りの培養液を別の方法でアッセイすることができます。これは、サンプルが貴重で複数回の分析が望ましい場合に有用な機能です。

方法

K562ヒト白血病細胞を完全培地で連続希釈し、100µLのアリコートをトリプリケートして白壁ルミノメータープレートにプレーティングした。各ウェルのATPレベルをViaLight Plusアッセイを用いて測定した。簡単に説明すると、50μLの細胞溶解試薬を加え、10分間インキュベート（室温）することで、各ウェルのセルを溶解した。溶解後、100μLのATPモニタリング試薬プラスを各ウェルに加え、混合液を2分間平衡化させた。プレートをSpectraMax® Lルミノメーターにセットし、SoftMax® Proソフトウェアで事前に設定したプロトコル（表1に示す設定）を使用して、各ウェルの1秒間の読み取りを行いました。結果を図1に示す。

ToxiLightアッセイでは、連続希釈したK562細胞の100μLサンプルを白壁のルミノメータープレートにプレーティングした。このアッセイは通常セルに対して非破壊的であるが、アッセイ感度を示す目的で、細胞を溶解して全アデニル酸キナーゼ（AK）を放出させた。ToxiLight 100%溶解試薬5μLを各ウェルに添加し、室温で10分間インキュベートした。放出されたAKはToxiLightアッセイを用いて測定した。簡単に説明すると、AK検出試薬100μLを各ウェルに添加し、混合液を5分間インキュベートした。プレートをSpectraMax Lルミノメーターにセットし、SoftMax Proソフトウェアで事前に設定したプロトコルを用いて各ウェルの1秒間の読み取りを行った（表1）。結果を図2に示す。

どちらのアッセイも優れた感度と再現性を提供する。両アッセイはロバスト性があり、使い方が簡単で、それぞれ独自の利点があります。ViaLightアッセイは、溶解後に放出されるATPを測定することにより、生存細胞の数を表示します。ViaLightアッセイは、未処理のコントロールと比較して、増殖と細胞毒性の両方を示すことができる。ToxiLightアッセイは、損傷細胞から放出されるAKのみを測定する非破壊アッセイであるため、細胞毒性のより正確な指標となる。一度AKを放出するようになった細胞は回復しない。このアッセイは、健康な細胞や増殖した細胞を示すことはありません。

ToxiLightアッセイの非破壊的サンプリングプロトコールは、他のアッセイと並行して使用することを可能にし、実験デザインの柔軟性を提供する。このことを実証するために、U937ヒト白血病細胞をDNAトポイソメラーゼI阻害剤であるカンプトテシンで処理し、ViaLight PlusとToxiLight試薬の両方を用いて以下のようにアッセイした。

U937細胞（5x105cells/mL）の100μLサンプルを96ウェルプレートにプレーティングし、濃度の増加する薬剤camptothecinを培養物に添加し、24時間インキュベートした。インキュベーション工程の後、サンプリングプロトコールに従い、ToxiLight試薬を用いてサンプルをアッセイした。20μLのセル上清を白色96ウェルプレートのウェルに移した。その後、各ウェルにAK検出試薬を100µL添加し、室温で5分間インキュベートした。残りの培養サンプルは、上記のように ViaLight Plus アッセイを用いてアッセイした。アッセイプレートをSpectraMax Lルミノメーターにセットし、SoftMax Proソフトウェアで事前に設定したプロトコルを使用して、各ウェルについて1秒間の読み取りを行いました（表1）。合成結果を図3に示す。

生存細胞の減少が細胞毒性イベントの結果であるという仮定は、必ずしも正しいとは限らない。ViaLightアッセイとToxiLightアッセイの組み合わせは、これを検証するために不可欠なツールである。この実験では、ViaLight Plusアッセイで示されるRLUの減少は、ToxiLightアッセイで測定されるアデニル酸キナーゼの流出量の増加を伴っている。これらのアッセイを組み合わせることで、余分な労力を最小限に抑えながら、より完全な情報を得ることができる（表2）。これらのアッセイは同じサンプルで実施されるので、データをウェル間で直接比較することができ、必要であればToxiLightアッセイのサンプリング手順を拡張することで、細胞死のカイネティクスの有用な指標を提供することができる。

結論

どのアッセイが自分のアプリケーションに最も適しているかはユーザー次第であるが、ここで示したように、ViaLight PlusとToxiLightアッセイの組み合わせは非常に多くの情報を提供するので、慎重に検討すべきである。Molecular Devices社のSpectraMax LマイクロプレートルミノメーターとSoftMax Proソフトウェアは、Lonza社のViaLight PlusおよびToxiLightアッセイと相性が良く、細胞死分野における迅速かつ高感度なテクノロジーの組み合わせを研究者に提供します。高感度で検出範囲が広いため、細胞毒性を容易に検出することができる。

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詳細については、www.moleculardevices.com/home.html。

参考文献

1. . Crouch S, Kozlowski R, Slater K and Fletcher J. (1993). 細胞増殖および細胞毒性測定としてのATP生物発光の使用。J. Immunol. Meth. 160(1) 81-8.
2. Squirrel D and Murphy J. (1997). アデニル酸キナーゼをセルマーカーとして用いた、ごく少数の微生物の迅速検出。A Practical Guide to Industrial Uses of ATP Luminescence in Rapid Microbiology P107-113.

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